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        H9c2細胞培養方法

        大鼠心肌細胞H9C2
        細胞描述:   
        大鼠心肌細胞H9C2是來源于胚胎期BD1X大鼠心臟組織的亞克隆細胞系,表現很多骨骼肌細胞的特性。當H9c2細胞匯合時,細胞就會融合成多核的肌管并對乙酰膽堿刺激有反應,但該細胞缺少像心肌細胞一樣的節律性搏動。此外,多項生化、電生理指標的檢測也表明其具有骨骼肌的很多特點。由于來源于心臟,H9C2細胞作為心臟成肌細胞也用于心肌疾病的研究。
        大鼠心肌細胞H9C2增殖能力取決于細胞取材、培養技術、培養條件等綜合因素。請按照正確的培養方法來解凍、傳代,以此保證細胞具備良好的增殖能力,方便您的后繼研究順利進行。
        貨號 規格 培養基 運輸 保存
        C0048 1×106個/管 DMEM+10% FBS 干冰運輸 液氮保存

        質量控制:   
        本細胞經過了檢測,不含有細菌、真菌、病毒(HIV、HBV、HCV)、支原體。

        培養條件:
        37℃,5% CO2,PH值7.2~7.4,無菌恒溫培養。

        用途:   
        本產品只提供給進一步的科研使用,不可應用于治療等其他方面。

        細胞相關操作(注意:細胞操作都需嚴格按照無菌操作)
        收到復蘇好的貼壁細胞的處理方法:
        1. 先從外包裝盒拿出細胞瓶,在細胞瓶表面噴一層酒精,并小心去掉封口膜;
        2. 在顯微鏡下觀察細胞狀態,并確定是否染菌,如有染菌,請立即拍照,并將細胞丟掉;
        3. 將培養瓶置于37°C,5% CO2的無菌培養箱中培養4-6小時;
        4. 倒掉多余的培養基,留正常體積的培養基;
        5. 重新將培養瓶置于37°C,5% CO2的無菌培養箱中培養過夜;
        6. 第二天傳代。

        收到凍存細胞的處理方法:
        1.37°C水浴預熱培養基;
        2.從液氮中取出細胞迅速放入37°C水浴快速解凍(解凍后不要繼續暖細胞);
        3.在超凈臺中加入5ml培養基重懸細胞,1000rpm離心5min;
        4.棄上清,加入5ml培養基重懸細胞后轉入T25培養瓶中,輕輕晃勻;
        5.置于37°C,5% CO2培養箱中培養(培養瓶蓋沒有透氣孔的話,瓶蓋不要擰太緊);
        6.第二天,用新鮮的培養基給細胞換液后繼續培養。

        細胞傳代
        1.當細胞融合度達到90%以上時,給細胞傳代;
        2.37°C水浴預熱培養基;
        3.在超凈臺中,棄培養基,加入2-5mlPBS清洗細胞后,再加入1ml胰酶消化細胞;
        4.顯微鏡下觀察到細胞變圓,有細胞開始脫離瓶壁時,加入5ml培養基終止消化;
        5.用移液器輕輕吹下瓶壁上剩余的細胞,并輕輕吹打將細胞吹散;
        6.將細胞移入離心管中,1000rpm離心5min;
        7.棄上清,加入15-20ml的培養基重懸細胞后轉入T75培養瓶中或按適當比例傳到T25瓶中(確保細胞貼壁后融合度在25-50%之間),細胞密度在1×104 cells/cm2 (2.5×105 cells/T-25瓶),混勻細胞懸液,確保細胞均勻分布;
        8.將培養瓶置于37°C,5% CO2的無菌培養箱中培養。
        細胞凍存
        1.37°C水浴預熱培養基;
        2.消化細胞后給細胞計數:
        1)洗凈晾干血小板計數板和蓋玻片,將蓋玻片完全覆蓋計數區;
        2)充分混勻細胞,取少量(0.1-0.5ml)細胞懸液與等體積的染色液臺盼藍混合,移液器吹吸混合均勻,用移液器取20ul混合液從蓋玻片兩端(與中間凹槽平行的兩端)分別打入細胞,以細胞懸液剛好浸濕蓋玻片為佳;
        3)顯微鏡下,數四個計數區的總細胞數,無活性細胞染成藍色,活細胞不被染色;
        4)細胞密度=細胞總數/4×10000×2;
        這里10000是不變的,因為計數的細胞是在體積為1mm×1mm×0.1mm即10-4cm3計數池內,1cm3=1ml,將四個計數區的細胞數除以4取平均數,乘2是補償加等體積臺盼藍形成的稀釋。
        5)細胞活性=活細胞數/細胞總數×100%。
        注:細胞密度高時,可調整細胞懸液和臺盼藍的比例,計數時乘以相應的稀釋倍數即可。
        3.當細胞密度達到傳代密度且細胞活性在90%以上時,可以凍存細胞。
        4.在超凈臺中將要凍存的細胞移入離心管,1000rpm離心5min。
        5.棄上清,用90%培養液+10%DMSO的混合液重懸細胞,并調整細胞密度為1-3×106/ml。
        6.將細胞懸液分裝到凍存管中(1-1.5ml/管)。
        7.將裝有細胞的凍存管放入程序降溫凍存盒,-20°C放1-2h后,-80°C過夜,然后快速轉移到液氮中。
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